Dient dem direkten Erregernachweis von folgenden allgemeinen Aborterregern und solchen, die im Rahmen der amtlichen Abortüberwachung bei Rindern, kleinen Wiederkäuern und Schweinen nachzuweisen sind:
Brucellen (Mikroskopie)
Coxiella burnettii (Genomnachweis)
Chlamydia abortus (Genomnachweis) (kleine Wiederkäuer & Schweine)
BVD (Bovines Virusdiarrhoe) (Genomnachweis)
Für den serologischen Nachweis von Antikörpern des Muttertieres gegen IBR/IPV (Wiederkäuer), Brucellen (Wiederkäuer & Schweine), PRRS (Schweine) oder Aujeszkysche Krankheit (Schweine), BVD (Rinder, wenn nur Blut vorhanden und immer Kanton SG):
BVD (Bovine Virus Diarrhoe) Antikörper
Aujeszkysche Krankheit
Brucella abortus (Rind) & Brucella melitensis Antikörper (Schaf & Ziege)
PRRS (Porcines Reproduktives und Respiratorisches Syndrom) (Schwein)
IBR (Infektiöse Bovine Rhinotracheitis) (Rind)
Indikation
Nachweis / Ausschluss von Actinobacillus pleuropneumoniae
Die Proben müssen gekühlt per A-Post oder mittels Kurier im Labor eintreffen.
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Bemerkungen
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen das Aujeszky/Pseudorabies-Virus beim Schwein anlässlich: Stichprobe BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum oder
5 ml EDTA-Blut
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
1 x wöchentlich (Freitag)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
25.70
Bemerkungen
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
PRV Virus gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Die Schweiz gilt frei von Aujeszky’scher Kranhkeit.
B
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von RNA des BTV-Virus bei Rind, Schaf, Ziege und weiteren empfänglichen Species anlässlich: Stichprobe BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial5 ml EDTA-Blut
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 1 Tag
Kühlschrank (2 bis 8°C) 3 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
Genomnachweis (RT-PCR)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
3 x wöchentlich (Montag, Mittwoch, Freitag)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
BLV Einzelprobe
120.75
BLV Poolprobe (Stichprobe)
34.20
Bemerkungen
Nachgewiesene BTV müssen typisiert werden. BTV-3 und BTV-8 werden intern nachgewiesen.
Pan-BTV positive Proben, die initial BTV-3 und BTV-8 negativ getestet sind, werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor typisiert, dessen Resultat ist endgültig.
BTV Virus gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Die Schweiz gilt als Endemiegebiet für die Typen 3 und 8.
Probenmaterialmindestens 10 x 15 cm grosses Brutwabenstück, welches genügend veränderte Alveolen enthält
Bei unklaren Resultaten kann mittels Genomnachweis im Referenzlabor nachuntersucht werden, bzw. können Sporen mittels Bakterieller Kultur sicher zwischen Paenibacillus alvei und Paenibacillus larvae differenziert werden.
Indikation
Nachweis von abnormem Prion-Protein PrPSc bei Rind, Schaf und Ziege anlässlich Verdachtsabklärung und Krankschlachtung
ProbenmaterialMedulaa oblongata, nativ (unfixiert)
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 1 Tag
Kühlschrank (2 bis 8°C) 7 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
EIA (Enzym-Immunoassay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
Montag – Freitag
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
64.85
Bemerkungen
Positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
Bovine Spongiforme Enzephalopathie gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen Brucella abortus beim Rind anlässlich: Stichprobe BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum oder
5 ml EDTA-Blut
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
1 x wöchentlich (Mittwoch)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
29.60
Bemerkungen
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
Brucella gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Die Schweiz gilt frei von Brucellose bei Haus- und Wildtieren.
Indikation
Serologischer Nachweis des BVD-Virus beim Rind anlässlich: Stichprobe BLV, Untersuchungsprogramm BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum oder
5 ml EDTA-Blut
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
2 x wöchentlich (Dienstag,Donnerstag)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
27.65
Bemerkungen
Bei positivem Ergebnis muss gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen eine Zweitprobe entnommen und zur Untersuchung ins Referenzlabor gesandt werden. Das Ergebnis des Referenzlabors ist endgültig.
BVD Virus gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Nur für Tiere über 6 Monate – maternale Antikörper können das Virus maskieren.
Die Schweiz ist in der Endphase der Ausrottung des BVD-Virus.
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen das BVD-Virus bei Rind, Schaf, Ziege und anderen empfänglichen Species: Stichprobe BLV, Untersuchungsprogramm BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum
Präanalytik
EDTA-Blut ist für diese Analyse nicht geeignet.
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
2 x wöchentlich (Dienstag, Donnerstag)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
25.10
Bemerkungen
Kreuzreaktion mit BDV – Differenzierung mittels Zellkultur.
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
BVD gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Nur für Tiere über 6 Monate – maternale Antikörper können so lange persistieren.
Die Schweiz ist in der Endphase der Ausrottung des BVD Virus.
ProbenmaterialOhrstanzen und Gewebeproben
Methode
Genomnachweis (PCR qualitativ)
Referenzbereich
negativ
C
Indikation
Nachweis von Campylobacter spp. aus Schlachthygieneproben
ProbenmaterialSchlachthygieneproben Geflügel
Methode
Erreger Differenzierung und Quantifizierung
Referenzbereich
< 10 KBE/g
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Methode
Genomnachweis (PCR qualitativ)
Referenzbereich
negativ
ProbenmaterialNativkotprobe von Heim-, Klein- und Grosstieren
Methode
Immunchromatographie
Referenzbereich
negativ
D
ProbenmaterialMilch
Methode
Hemmstofftest
Referenzbereich
negativ
Indikation
Kultureller Nachweis / Ausschluss von Streptococcus equi ssp. equi (Druseerreger) beim Pferd
ProbenmaterialAbstriche und Spülflüssigkeit vom Respirationstrakt (Nase, Rachen, Luftsack-Spülung etc.)
ProbenmaterialMuskulatur und Nieren von Rind, Schaf, Ziege oder Schwein
Methode
Hemmstofftest
Referenzbereich
negativ
G
ProbenmaterialNativkotprobe von Heim-, Klein- und Grosstieren
Methode
Immunchromatographie
Referenzbereich
negativ
Methode
Mikroskopie
H
Indikation
Nachweis von Helmintheneiern und Protozoen in Kotproben mittels Anreicherung aufgrund des spezifischen Gewichtes
Probenmaterialca. 10 Gramm Nativkot
Methode
Sedimentation, Flotation
Referenzbereich
negativ
Indikation
Bestätigung eines positiven Hemmstofftests der Muskulatur, der Niere oder eventuell der Leber
ProbenmaterialMuskulatur und Niere, ev. Leber von Rind, Schaf, Ziege oder Schwein
Methode
Hemmstofftest
Referenzbereich
negativ
I
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen das BHV-1 Virus beim Rind anlässlich: Stichprobe BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum
Präanalytik
EDTA-Blut ist für diese Analyse nicht geeignet.
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
1 x wöchentlich (Mittwoch)
Zusätzliche Frequenz nach Dringlichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
25.70
Bemerkungen
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
IBR gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Die Schweiz gilt frei von IBR (Infektiöse bovine Rhinotracheitis) / IPV (Infektiöse pustulöse Vaginitis).
K
Indikation
Anzüchtung von Drittlarven (L3) von (Tricho-) Strongyliden zwecks Differenzierung auf Gattungsebene
Einsatz primär beim Pferd zur Unterscheidung von grossen und kleinen Strongyliden
Probenmaterial20-50 Gramm rektal entnommener oder frisch abgesetzter Kot
Methode
Anzüchtung, Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von Lungenwurm Larven bei Wiederkäuern, Pferden und Fleischfressern mittels Larven Auswanderungsverfahren
Probenmaterialca. 10 Gramm frischer Nativ-Kot
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
L
Indikation
Nachweis und der Quantifizierung von Listeria monocytogenes und anderen Listeren Spezies in Lebensmittelproben
ProbenmaterialLebensmittelproben
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
M
Indikation
Kultureller Nachweis von Mastitiserregern bei Rindern, Ziegen oder Schafen
ProbenmaterialMilchproben oder Eutersekret von Rindern, Ziegen oder Schafen
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Indikation
Mikrobiologische Untersuchung von Muskeln, Organen und Lymphknoten von Schlachttierkörpern, zur Beurteilung der Geniessbarkeit eines Schlachttierkörpers im Rahmen der Fleischkontrolle
Methode
Hemmstofftest, Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
ProbenmaterialKlauenabstriche
Methode
Genomnachweis (PCR qualitativ)
Referenzbereich
negativ
Indikation
Cryptosporidiose vor allem bei Säugetieren, Vögeln und Reptilien
ProbenmaterialNativkotprobe oder SAF-fixiert
Kotprobe in SAF Medium
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von Brucellen aus Placenta Material oder (Lab-) Magensediment bei Aborten von Rindern, Schafen, Ziegen und Schweinen
Probenmaterial
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Indikation
Quantitative Bestimmung der Ausscheidung von Helmintheneiern und Kokzidenoozysten
Probenmaterialmindestens 4 Gramm rektal entnommener oder frisch abgesetzter Kot
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Indikation
Halbautomatisiertes Vefahren zur Ermittlung der aeroben mesophilen Keimzahl, sowie der Anzahl koloniebildender Einheiten (KBE) von Enterobacteriaceae, Escherichia Coli, Staphylococcus aureus und Bacillus Cereus
ProbenmaterialLebensmittelproben
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von Dermatophyten, Hefen und Schimmelpilzen
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
O
Indikation
Nachweis von Erregern des Aussen und Mittelohrs (Bulla)
ProbenmaterialGehörgangsabstriche in Transportmedium oder
Spülflüssigkeit aus Bulla tympani (Mittelohr)
Methode
Erregernachweis
P
Indikation
Nachweis von Mycobacterium avium spp. paratuberculosis (MAP) in Serum und Plasmaproben von Rindern und kleinen Wiederkäuern
Probenmaterial3 ml Serum oder
5 ml EDTA-Blut
Methode
EIA (Enzym-Immunoassay)
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen das PRRS-Virus beim Schwein anlässlich: Stichprobe BLV, Abortuntersuchung, Tierverkehr, Import, Export, Verdachtsabklärung, Freitestung, Gesundheitscheck
Probenmaterial3 ml Serum oder
5 ml EDTA-Blut
Präanalytik
Aussen mit Blut verschmutzte Probenröhrchen mit Wasser reinigen.
Stabilität
Raumtemperatur (20 bis 26°C) 3 Tage
Kühlschrank (2 bis 8°C) 14 Tage
Tiefgefroren (-15 bis -30°C) 12 Monate
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Referenzbereich
negativ
Frequenz
1 x wöchentlich (Freitag)
Zusätzliche Frequenz nach Dinglichkeit
Kosten
Tarif
Taxpunkte
Preis in CHF
29.60
Bemerkungen
Positive und fraglich positive Proben werden gemäss TW des Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen im Referenzlabor überprüft, dessen Resultat ist endgültig.
PRRS Virus gehört zu den meldepflichtigen Erregern. Ein positiver Befund wird an den zuständigen kantonalen Veterinärdienst und das Bundesamt für Lebensmittelsicherheit und Veterinärwesen BLV (Meldepflicht gemäss Tierseuchenverordnung) gemeldet (Labormeldung).
Die Schweiz gilt frei von PRRS.
Methode
Genomnachweis (PCR qualitativ)
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis und Quantifizierung von Pseudomonas spp. in Lebensmittel- und Umweltproben
ProbenmaterialLebensmittelproben wie frisches Geflügelfleisch oder Fischprodukte (mind. 10 Gramm)
Methode
Erreger Differenzierung und Quantifizierung
Referenzbereich
Frischfisch und Fischzubereitungen frisch oder TK (Gruppe 9121) < 1‘000‘000 KBE/g
Geflügelfleisch roh (Standard 1 oder Standard 2) < 10‘000‘000 KBE/g (gemäss Frifag)
Indikation
Kultureller Nachweis / Ausschluss von Corynebacterium pseudotuberculosis
ProbenmaterialAbstriche und Punktate von (Haut-) Abszessen von Kleinwiederkäuern und Pferden
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
R
Methode
Empfindlichkeitsprüfung
ProbenmaterialNativkotprobe von Wiederkäuern und Schweinen
Methode
Immunchromatographie
Referenzbereich
negativ
S
Indikation
Nachweis vegetativer und encystierter Stadien von Darmprotozoen
ProbenmaterialKotprobe im SAF-Medium oder
Nativkotprobe
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Indikation
Bestätigungstest bei positivem Salmonellen Screening
Probenmaterial3 ml Serum oder
Einzeleigelb von positiven Pools des Flocktype Ansatzes
Methode
ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay)
Bemerkungen
Diese Analyse wird nur durchgeführt bei einem positivem Salmonellen Screening.
ProbenmaterialNativkotproben aller Tierarten
Methode
Erregernachweis
Referenzbereich
negativ
Indikation
Nachweis von Antikörpern gegen Salmonella Enteritidis und Salmonella Typhimurium vom Huhn
ProbenmaterialBrutwabe mindestens 10 x 15 cm gross oderGemüll von Bienen
Methode
Makroskopische Beurteilung, Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
Z
Indikation
Nachweis oder Identifikation von säurefesten Bakterien wie atypische Mykobakterien (M. avium spp. paratuberculosis (MAP), M. smegmatis, etc.), Nocardien, Streptomyceten und Actinomyceten
ProbenmaterialIsolate oder
Wundabstriche, insbes. von unterminierten Wundrändern oder
Milch oder
Darmschleimhautabstriche von Sektionsgut oder
Diverses Organmaterial inkl. Lymphknoten
Methode
Mikroskopie
Referenzbereich
negativ
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